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抗体常见问题之WB


问题原因解决方案
条带形状不好看胶凝的不均匀,聚合不好灌胶前将溶液充分混匀
上样齿扭曲使上样孔大小不一上样前用针头将齿拨正,注意不要将针头插入胶内
某些样品盐浓度较高除盐或将样品盐浓度调成一致
每孔上样量不一致调整上样量使基本一致
缓冲液陈旧,成分改变重配
凝胶下面有气泡电泳前先将气泡赶走
电泳时温度过高降低电流或电压
目的蛋白信号弱样品上样量不足或目的蛋白浓度过低加大上样量或浓缩样品
转膜效率低以下单列
抗体浓度低增加抗体浓度或延长孵育时间
显色剂底物浓度不足增加显色剂用量
显色剂失效更换显色剂(吸取A、B液的枪头不可混用)
显色或曝光时间不足延长显色或曝光时间
转膜效率低转膜缓冲液pH值与目的蛋白等电点相近提高转膜缓冲液pH值
凝胶与膜之间存在气泡转膜前要排尽气泡
凝胶与转印膜两侧滤纸大面积接触滤纸、转印膜和凝胶大小要基本一致,避免滤纸直接接触
转印膜种类选择不当使用质量可靠的PVDF膜或硝酸纤维素膜
电压或电流过小湿转时20mA恒流,半干转时25V左右恒压
转印时间过长或过短,蛋白还在凝胶中或穿透转印膜先电泳,根据蛋白大小及转印装置选择合适的转印时间
湿转过程中环境温度过高使用预冷的转膜缓冲液或将装置至于4度
显色或曝光后无条带胶与膜方向反了

转膜时应依次放好PDVF膜与凝胶所对应的电极,即凝胶对应

负极,PDVF膜对应正极。

选用的一抗、二抗及显色方法不合适选择合适的一抗、二抗和显色方法
目的蛋白含量低于检测下限加大上样量或浓缩样品
抗体效价过低增加抗体浓度
抗体孵育时间不足延长孵育时间,37°C孵育1小时以上
抗体过度洗涤减少洗涤时间及次数
加入HRP底物反应与曝光检测之间间隔时间过长反应3到5分钟及时检测
背景过高封闭物用量不足提高封闭物浓度,孵育时保证封闭液完全浸没转印膜
封闭物使用不当检测生物素标记的蛋白时不可用脱脂奶粉封闭
封闭时间不够室温37度封闭1小时以上,4度封闭过夜
抗体非特异性结合降低抗体浓度,减少孵育时间
抗体浓度过高或洗涤不够降低抗体浓度,增加洗涤次数和时间
化学显色底物过多按说明书加入适量的显色底物
杂带多杂蛋白多处理目的蛋白
抗体特异性不强使用特异性强的抗体
抗体孵育时间过久减少抗体孵育时间
二抗与抗原有交叉反应选择合适的封闭物
底物显色与曝光时间长了缩短显色及曝光的时间
大分子量WB膜孔径太小更换孔径较大的膜
转膜电压电流低提高电压/电流
转膜时间短延长转膜时间
胶浓度太大使用低浓度的胶
转膜缓冲液配方不合适调整转膜缓冲液中甲醇及SDS浓度


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